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ICS 65.120 B 46 GB 中华人民共和国国家标准 GB/T 287182012 饲料中T-2毒素的测定 免疫亲和柱净化-高效液相色谱法 Determination of T-2 toxin in feedHigh performance liquid chromatography with immunoaffinity column clean-up 2012-09-03发布 2013-02-01实施 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局 发布 中国国家标准化管理委员会 GB/T 28718—2012 前言 本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草。 本标准由全国饲料工业标准化技术委员会(SAC/TC76)提出并归口。 本标准起草单位:上海市饲料质量监督检验站、上海市农业科学院农产品质量标准与检测技术研究 所、浙江大学饲料科学研究所。 本标准主要起草人:赵志辉、林淼、杨海锋、陆天华、顾赛红、凤懋熙、武爱波 I GB/T28718—2012 饲料中T-2毒素的测定 免疫亲和柱净化-高效液相色谱法 1范围 本标准规定了饲料中T-2毒素含量的免疫亲和柱净化-高效液相色谱测定方法。 本标准适用于饲料原料、配合饲料、浓缩饲料中T-2毒素含量的测定。 本标准的方法检出限为10μg/kg,定量限为30ug/kg。 2规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用干本文件 GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法 GB/T14699.1饲料采样 3原理 用甲醇和水混合溶液提取试样中的T-2毒素,经免疫亲和柱净化,1-葱睛衍生化后,用高效液相色 谱荧光检测器测定,外标法定量。 4试剂和材料 除非另有规定,在分析中仅使用确认为分析纯的试剂和符合GB/T6682中规定的一级水。 4.1甲醇:色谱纯。 4.2乙睛:色谱纯。 4.3甲苯:色谱纯。 4.4甲醇+水(80+20)取80mL甲醇加20mL水。 容至100mL。 4.61-蒽(1-anthroylnitrile,1-AN,0.3g/L):称取0.030g1-葱睛用甲苯溶解并定容至100mL。 4.7T-2毒素标准品:纯度大于等于98%。 标准工作液。 4.9T-2毒素标准工作液:根据使用需要,准确吸取一定量的T-2毒素标准储备液,用乙睛稀释,分别 配成相当于10ng/mL、50ng/mL、100ng/mL、150ng/mL、200ng/mL的标准工作液,4℃保存,有效 期7d。 4.10T-2毒素免疫亲和柱:柱容量大于等于2ug。 4.11玻璃纤维滤纸:直径11cm,孔径1.5μm,无荧光特性。 1 GB/T28718—2012 5仪器和设备 5.1实验室常用设备。 5.2高效液相色谱仪:配有荧光检测器。 5.3 分析天平:精度为0.0001g。 5.4米 粉碎机:转速10000r/min。 5.5 均质器:转速大于10000r/min。 5.6 涡旋混合器。 5.7 注射器:10mL。 5. 8 氮气吹干仪。 5.9i 试验筛:1mm孔径。 空气压缩机。 5. 10 5. 11 离心机。 5.12 超声波仪:功率大于180W。 5.13天平:精度为0.01g。 5.14水浴锅。 6试样的制备 按GB/T14699.1规定,取有代表性饲料样品至少500g,四分法缩减至少100g,磨碎,过试验筛 (5.9),混匀装入密闭容器中,避光低温保存备用。 7分析步骤 7.1提取 称取试样50g(精确到0.01g)于500mL烧杯中,加人100mL甲醇+水(80+20),高速均质2min 或超声30min,3000r/min离心5min,上清液经定量滤纸过滤,移取10.0mL滤液于50mL容量瓶 中,加水定容至刻度,混匀,用玻璃纤维滤纸过滤至滤液澄清,进行免疫亲和柱净化操作。 7.2净化 将免疫亲和柱连接于注射器(5.7)下,准确移取10.0mL提取液(7.1).注入注射器中。将空气压 缩机与注射器连接,调节压力,使溶液以每秒约1滴的流速通过免疫亲和柱,直至空气进入亲和柱中。 再用10mL水淋洗免疫亲和柱,流速约为每秒1滴至2滴,直至空气进人亲和柱中,弃去全部流出液, 抽干小柱。 7.3洗脱 准确加入1.0mL甲醇洗脱,流速约为每秒1滴,收集全部洗脱液于干净的玻璃试管中。 7.4衍生化 7.4.1T-2毒素标准工作液的衍生化:取不同浓度的T-2毒素标准工作液各1.0mL,在50℃下用氮 气吹干,加入50uL4-二甲基氨基吡啶(4.5)和50μL1-葱睛(4.6),在涡旋混合器上混匀1min,50℃水 浴反应15min,50℃下用氮气吹干,用1.0mL流动相(7.5.2)溶解,高效液相色谱测定。 N GB/T28718—2012 7.4.2样品的衍生化:将洗脱液(7.3在50℃下用氮气吹干,按7.4.1步骤进行。 7.5高效液相色谱参考条件 7. 5. 1 色谱柱:Cis柱,长150mm,内径4.6mm,粒径5μm,或相当者。 7. 5. 2 流动相:乙睛(4.2)十水=80十20(体积比)。 7.5.3流速:1.0 mL/min。 7.5.4 检测波长:激发波长:381nm,发射波长:470nm。 7.5.5进样体积:20μL。 7.5.6柱温:35℃。 7. 6 定量测定 性,以标准工作液做单点或多点校准,并用色谱峰面积积分值定量。在上述色谱条件下,标准品色谱图 参见图A.1。 7.7平行试验 按以上步骤,对同一试样进行平行试验测定。 8结果计算 S 试样中T-2毒素含量按式(1)计算: AIXcXV X=: .(1) AsXm 式中: X 一一T-2毒素的含量,单位为微克每千克(ug/kg); A——试样溶液中T-2毒素衍生物的峰面积; 标准工作溶液中T-2毒素衍生物的浓度,单位为微克每毫升(μg/mL); V 试样溶液最终定容体积,单位为毫升(mL); 标准工作溶液中T-2毒素衍生物的峰面积; 最终样液所代表的试样量,单位为千克(kg)。 m 测定结果用平行测定的算术平均值表示,计算结果表示到小数点后一位。 9 重复性 同一实验室由同一操作人员使用同一台仪器完成的两个平行测定结果的相对偏差不大于10%
GB-T 28718-2012 饲料中T-2毒素的测定 免疫亲和柱净化-高效液相色谱法
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